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比对生成view

时间:2025/8/23 9:07:24来源:https://blog.csdn.net/lcl13193673272/article/details/142144634 浏览次数:0次

问题一:

GSM5395711: HeLa-CUT-Tag-BG4; Homo sapiens; OTHER (SRR14879760)对于这个细胞系的sra数据,如何从该数据集中拿到NOP56基因的数据?

解决一:

要从 SRA 数据集中提取特定基因(如 NOP56 基因)的数据,特别是涉及 CUT&Tag 实验的 SRA 数据,你可以按照以下步骤操作。

步骤 1:下载 SRA 数据

首先,你需要使用 prefetchfastq-dump 工具从 NCBI SRA 中下载数据。

使用 prefetch 下载 SRA 文件:
prefetch SRR14879760

使用 fasterq-dump 将 SRA 数据转换为 FASTQ 格式:

fasterq-dump SRR14879760

这将会在当前目录生成一个 .fastq 文件,包含所有读取的原始序列数据。

步骤 2:对参考基因组进行比对

为了提取与 NOP56 基因相关的序列数据,你需要将下载的 FASTQ 数据比对到人类基因组参考序列(GRCh38/hg38)。通常使用 BWABowtie2 来进行序列比对。

安装 BWA 或 Bowtie2:
sudo apt-get install bwa     # 如果有sudo权限

或者使用 Conda 安装:

conda install -c bioconda bwa
比对 FASTQ 数据到参考基因组:

你需要人类参考基因组的 FASTA 文件,通常可以从 UCSC 或 NCBI 下载。假设参考基因组文件为 hg38.fa,使用以下命令进行比对:

bwa index hg38.fa    # 首次比对时需对参考基因组建立索引
bwa mem hg38.fa SRR14879760.fastq > SRR14879760.sam

这会生成一个 .sam 文件,其中包含每个序列读取的比对信息。

步骤 3:提取与 NOP56 基因相关的序列

接下来,你可以使用 samtools 从比对文件中提取与 NOP56 基因对应的染色体区域序列。

安装 samtools:
sudo apt-get install samtools   # 如果有sudo权限

或者使用 Conda 安装:

conda install -c bioconda samtools
获取 NOP56 基因的染色体位置

根据人类基因组数据库(如 UCSC Genome Browser),NOP56 基因位于 chr1:119,185,083-119,196,846(根据 GRCh38/hg38 版本)。

提取 NOP56 基因的比对数据:

使用 samtools 来提取 NOP56 基因所在区域的比对结果:

samtools view -b SRR14879760.sam chr1:119185083-119196846 > NOP56.bam
这将提取 NOP56 基因区域内的比对结果,并生成一个名为 NOP56.bam 的文件。

步骤 4:查看和分析 NOP56 基因的 BAM 文件

你可以使用 samtoolsIGV 等工具来查看提取的 BAM 文件,并进一步分析与 NOP56 基因相关的序列。

使用 samtools 查看比对结果:
samtools view NOP56.bam
使用 IGV 进行可视化

你可以将生成的 NOP56.bam 文件导入到 IGV(Integrative Genomics Viewer)中进行可视化。IGV 是一个功能强大的基因组浏览工具,适合查看比对数据和注释信息。

总结

通过以下步骤,你可以从 SRA 数据集中提取与 NOP56 基因相关的 CUT&Tag 数据:

  1. 使用 prefetchfasterq-dump 下载和转换 SRA 数据。
  2. 使用 BWA 或 Bowtie2 将序列比对到人类参考基因组。
  3. 使用 samtools 提取 NOP56 基因对应的染色体区域数据。
  4. 使用 IGV 等工具进一步分析提取的 BAM 文件。

问题2:figure1的图D是什么图,怎么得到的

解决2:

这篇文章中的figure1的图D是一个基因组浏览器视图,展示了在HaCaT细胞中G4 CUT&Tag和G4 ChIP-seq的信号。具体来说,图D展示了在特定基因位点上,使用RPGC标准化的G4 CUT&Tag和G4 ChIP-seq的覆盖度轨迹。

如何得到图D:

  1. 数据生成

    • 首先,使用G4 CUT&Tag和G4 ChIP-seq技术在HaCaT细胞中分别生成测序数据。
    • 这些数据经过比对(例如使用bowtie2)和预处理(例如去除黑名单区域、去重等),生成BAM文件。
  2. 数据处理

    • 使用deepTools软件包中的bamCoverage工具,以RPGC(1倍基因组覆盖率)参数对BAM文件进行标准化处理,生成覆盖度轨迹。
    • 这些轨迹以bigWig格式保存,可以在基因组浏览器中进行可视化。
  3. 可视化

    • 使用基因组浏览器(如IGV或UCSC Genome Browser)加载处理后的bigWig文件。
    • 在基因组浏览器中选择特定的基因位点(例如Nanog基因位点),展示G4 CUT&Tag和G4 ChIP-seq在该位点的覆盖度轨迹。

图D的组成部分:

  • RPGC标准化的覆盖度轨迹

    • G4 CUT&Tag和G4 ChIP-seq的覆盖度轨迹分别以不同的颜色显示。
    • 轨迹的Y轴表示标准化后的覆盖度,X轴表示基因组位置。
  • 基因组位置

    • 图D中会标注特定的基因位点(例如Nanog基因),以便于观察和分析。
  • 其他标记

    • 可能还会包括一些其他标记,如转录起始位点(TSS)、增强子区域等,以便更好地理解G4结构在这些区域的存在情况。

实际操作

在ucsc下载人类全基因组数据集

wget https://hgdownload.soe.ucsc.edu/goldenPath/hg38/bigZips/hg38.fa.gz

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